花卉培养基(室内植物红掌该如何养殖)

培养基质

红掌所需栽培基质要求不是太高，只需具有保水保肥能力强、通透性好、不积水、不含有毒物质并能固定植株等性能。但种植前，基质还必须经彻底的消毒处理，以杀灭病虫害，保持其正常生长。?

在有条件下、规范化大面积生产过程中所使用的基质主要是以泥炭土为主加小量珍珠岩同粗河砂，并用小量插花泥铺垫盆底。家庭中小量建议在园艺店购买配制好的培养土再加陶粒或干树皮混合（比例2：1）做基质交易亦相当理想。

温度

红掌对温度较敏感，适宜生长温度14-35℃，最适温度19-25℃，昼夜温差3-6℃，即最好白天21-25℃，夜间19℃左右，在这样的温度下，有利于红掌养分的吸收和积累，对生长开花极为有利。

长时间低于13℃左右，植株虽不会死亡，但很长时间难以恢复生长；当温度高于35℃，且光照较足，叶面易出现灼伤，因受害叶片不会逆转，影响红掌整体品质，也为下步养护制造了困难。

家庭养护，在夏季可放在房间的阴面或厅内有散射光的位置，也可放在室外阳光直射不到的地方，如树荫下、花丛下或阴凉处。

光照

红掌是按照“叶→花→叶→花”的循环生长的。花序是在每片叶的腋中形成的。这就导致了花与叶的产量相同。因此，光照管理的成功与否，直接影响红掌产生同化物的多少和后期的产品质量。

为防止花苞变色或灼伤，必须有遮阴保护。温室内红掌光照的获得可通过活动遮光网来调控。在晴天时遮光照，早晨、傍晚或阴雨天则不用遮光。?

然而，红掌在不同生长阶段对光照要求各有差异。如营养生长阶段(平时摘去花蕾)时光照要求较高，可适当增加光照，促使其生长。开花期间对光照要求低，适当遮光，以防止花苞变色，影响观赏。

水分

红掌属于对盐分较敏感的花卉品种，如果pH值过小，花茎变短，就会降低观赏价值。自来水适宜栽植红掌。 盆栽红掌在不同生长发育阶段对水分要求不同。

幼苗期由于植株根系弱小，在基质中分布较浅，不耐干旱，栽后应每天喷2-3次水，要经常保持基质湿润，促使其早发多抽新根，并注意盆面基质的干湿度；

中、大苗期植株生长快，需水量较多，水分供应必须充足；

开花期应适当减少浇水，增施磷、钾肥，以促开花。在浇水过程中一定要干湿交替进行。

在高温季节通常2-3天浇水一次，中午还要利用喷淋系统向叶面喷水，以增加室内的相对湿度。寒冷季节浇水应在上午9时至下午4时前进行，以免冻伤根系。

施肥

在冬季应放在房间的阳面，栽培建议用缓释肥和水溶性肥料结合使用。根据荷兰栽培的经验，对红掌进行根部施肥比叶面追肥效果要好得多。

因为红掌的叶片表面有一层蜡质，不能对肥料进行很好的吸收。液肥施用要掌握定期定量的原则，秋季一般3-4天为一个周期，如气温高，可以视盆内基质干湿程度可2-3天浇肥水一次；

夏季可2天浇肥水一次，气温高时可多浇一次水；

秋季一般5-7天浇肥水一次。施肥时间因气候环境而异，一般情况下，在上午8时至下午17时前施用；冬季或初春在上午9时至下午16时前进行。

春、秋两季一般每3天浇肥水一次，如气温高视盆内基质干湿可2一3天浇肥水一次；夏季可2天浇肥水一次，气温高时可加浇水一次；冬季一般每5一7天浇肥水一次。也可直接使用红掌专用肥 。

常见问题

1、黄叶现象?

1-1、温度过低而导致的烂根。?

1-2、肥水过多，因为肥料施用过多使花烛的新陈代谢产生障碍，使得叶片变黄 浇水过量也会使花烛的叶片发黄影响观赏。?

1-3、光照过足会使花烛的叶片变黄并失去光泽，生长缓慢,叶丙短、叶片小，卷曲不展。

2、长势旺盛但不开花?

原因一般是放置地点过于阴暗,氮肥过多。

扩展资料：

花烛(Anthurium andraeanum?Linden)天南星科多年生常绿草本植物。茎节短;叶自基部生出，绿色，革质，全缘，长圆状心形或卵心形。叶柄细长，佛焰苞平出，革质并有蜡质光泽，橙红色或猩红色;肉穗花序**，可常年开花不断。

花烛原产于哥斯达黎加、哥伦比亚等热带雨林区。常附生在树上，有时附生在岩石上或直接生长在地上，性喜温暖、潮湿、半阴的环境，忌阳光直射。花烛花姿奇特美妍。花期持久，适合盆栽、切花或庭园荫蔽处丛植美化。

天南星科多年生常绿草本植物。茎节短;叶自基部生出，绿?色，革质，全缘，长圆状心形或卵心形。叶柄细长，佛焰苞平出，卵心形，革质并有蜡质光泽，橙红色或猩红色;肉穗花序长5-7厘米，**，可常年开花不断。

花烛原产于哥斯达黎加、哥伦比亚等热带雨林区。常附生在树上，有时附生在岩石上或直接生长在地上。原产于南美洲热带雨林潮湿、半阴的沟谷地带，通过引种改良和用光、温、水调节系统的大棚栽培，欧洲、亚洲、非洲皆有广泛栽培。

分株时期主要在凉爽高湿的春季，秋季阴凉天气也可分株。切忌在炎热的夏天或干燥寒冷的季节分株。分株时须注意以不伤母株为原则，太大的侧芽不分，靠太紧的侧芽不分，太弱小的侧芽也不分，主要分出比较容易与母株分离且较为健壮、至少有2条主要根系以上的侧芽。

移植苗时分株可用手均匀用力，将侧芽与母株在地下茎芽眼处分离，较难分离时用锐利的消毒刀片在位于芽眼处将其切开。切花除芽分株须先拨开土层，注意根系的分布以及地下茎芽眼处，小心将芽眼处切开，再取出侧芽。

切开的侧芽待伤口稍干后将其假植于阴凉处进行促根及恢复生长。种植时须使根系平展，植株直立，必要时进行支撑，种后不能立即浇水，可向叶面喷水保持湿度，2天后即可依情况进行浇水或施稀薄肥液。

参考资料：

　试剂

　· 乙醇.

　· 吲哚乙酸（ IAA） 或 2 ,4 – D （生长素类似物）.

　· 氯化汞（升汞）或次氯酸钠.

　· 6- 苄基氨基腺嘌呤（ 6-BA ）

　· MS 培养基

　·0.1 mol/L NaOH与 0.1 mol/L HCl

　配制培养基

　（ 1 ）愈伤组织诱导培养基：MS 培养基（蔗糖含量为 10 g/L ,2,4 – D 含量为 2 mg/L ,琼脂10 g/L ）.

　（ 2 ）试验培养基：在 MS 培养基中加入 IAA 和 6–BA .

　吲哚乙酸（IAA)先用少量 0.1 mol/L NaOH 溶解,6- 苄基氨基腺嘌呤先用少量 0.1 mol/L HCl 溶解,然后用蒸馏水稀释,再加入培养基中.

　仪器设备

　培养室,高压灭菌锅,水浴锅,解剖刀,三角烧瓶（ 100mL ）,烧杯,量筒,组培瓶,组培盖或封口膜,棉线,接种箱或超净工作台,分析天平,长镊子,剪刀,容量瓶,移液管,牛皮纸.

　培养基灭菌

　将配好的培养基加入琼脂加热溶解,调至 pH 5.8 ,趁热分装于 100 mL组培瓶中,每瓶约 20 mL .待培养基冷却凝固后,盖上组培盖,或盖上封口膜并用棉线扎牢,然后在高压灭菌锅中 121 ℃（ 1 kg/cm 2 ）下灭菌 20 min .取出组培瓶放在台子上,冷却后备用.接种操作所需的一切用具（如长镊子、解剖刀、剪刀等）及灭菌水,需同时灭菌.

培养步骤　

第一步,将采来的植物材料除去不用的部分,将需要的部分仔细洗干净,如用适当的刷子等刷洗.把材料切割成适当大小,即灭菌容器能放入为宜.置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时,冲洗时间视材料清洁程度而宜.易漂浮或细小的材料,可装入纱布袋内冲洗.流水冲洗在污染严重时特别有用.洗时可加入洗衣粉清洗,然后再用自来水冲净洗衣粉水.洗衣粉可除去轻度附着在植物表面的污物,除去脂质性的物质,便于灭菌液的直接接触.当然,最理想的清洗物质是表面活性物质—吐温.

　第二步是对材料的表面浸润灭菌.要在超净台或接种箱内完成,准备好消毒的烧杯、玻璃棒、70%酒精、消毒液、无菌水、手表等.用70%酒精浸10～30秒.由于酒精具有使植物材料表面被浸湿的作用,加之70%酒精穿透力强,也很易杀伤植物细胞,所以浸润时间不能过长.有一些特殊的材料,如果实、花蕾、包有苞片、苞叶等的孕穗,多层鳞片的休眠芽等等,以及主要取用内部的材料,则可只用70%酒精处理稍长的时间.处理完的材料在无菌条件下,待酒精蒸发后再剥除外层,取用内部材料.

　第三步是用灭菌剂处理.表面灭菌剂的种类较多,可根据情况选取1—2种使用见表.第四步是用无菌水涮洗,涮洗要每次3min左右,视采用的消毒液种类,涮洗3-l0次左右.无菌水涮洗作用是免除消毒剂杀伤植物细胞的副作用注意：①酒精渗透性强,幼嫩材料易在酒精中失绿,所以浸泡时间要短,防止酒精杀死植物细胞.②老熟材料,特别是种子等可以在酒精中浸泡时间长一些,如种子可以浸泡5分钟.③升汞的渗透力弱,一般浸泡10分钟左右,对植物材料的杀伤力不大.④漂白粉容易导致植物材料失绿,所以对于幼嫩材料要慎用.⑤在消毒液中加入浓度为0.08—0.12%的吐温20或80（一种湿润剂）,可以降低植物材料表面的张力,达到更好的消毒效果.